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基因编辑新款“瑞士军刀”问世,小巧又好用!

2025-02-01 10:00:09
来源:智能MOTOVIS

出品:

作者:龚路遥(中国科学院微生物研究所)

监制:中国科普博览

编者按:为揭开科技工作的神(shén)秘(mì)面(miàn)纱(shā),前(qián)沿(yán)科(kē)技(jì)项(xiàng)目(mù)推(tuī)出(chū)“我(wǒ)和(hé)我(wǒ)的(de)研(yán)究(jiū)”系(xì)列(liè)文章(zhāng),邀(yāo)请(qǐng)科(kē)学(xué)家(jiā)亲(qīn)自(zì)执(zhí)笔(bǐ),分(fēn)享(xiǎng)科(kē)研(yán)历(lì)程(chéng),打(dǎ)造(zào)科(kē)学(xué)世(shì)界(jiè)。让(ràng)我(wǒ)们(men)跟(gēn)随(suí)站(zhàn)在(zài)科(kē)技(jì)最(zuì)前(qián)沿(yán)的(de)探(tàn)索(suǒ)者(zhě)们(men),开(kāi)启(qǐ)一(yī)段(duàn)段(duàn)充(chōng)满(mǎn)热(rè)情(qíng)、挑(tiāo)战(zhàn)与(yǔ)惊(jīng)喜(xǐ)的(de)旅(lǚ)程(chéng)。

去(qù)年(nián)8月(yuè)23日(rì),我(wǒ)们(men)团(tuán)队(duì)——中(zhōng)国(guó)科(kē)学(xué)院(yuàn)微(wēi)生(shēng)物(wù)研(yán)究(jiū)所(suǒ)向(xiàng)华(huá)团(tuán)队(duì),在(zài)国(guó)际(jì)期(qī)刊(kān)《自(zì)然(rán)·通(tōng)讯》(Nature Communications)杂志上发表了题为《工程化最小I型 CRISPR-Cas 实现人类细胞的转录激活和碱基编辑》的最新研究成果,成功应用Class 1中最精简的I-F2型系统,在人类细胞中实现了高效基因调控,并开发了具有宽编辑窗口的碱基编辑工具。

论文DOI: 10.1038/s41467-024-51695-x

怎样理解这款基因编辑的新工具呢?它又将如何改变我们的生活?

基因编辑技术,就像一把“基因魔剪”

基因编辑作为近年来发展迅猛(měng)的(de)颠(diān)覆(fù)性技术,具有广阔的应用前景,如修复遗传疾病的突变基因、提高农作物的产量和抗旱性等。

基因编辑技术是指(zhǐ)对(duì)生(shēng)命(mìng)遗(yí)传(chuán)物(wù)质(zhì)(DNA)进(jìn)行(xíng)精(jīng)确(què)改(gǎi)造(zào)的(de)技(jì)术(shù)。简(jiǎn)单(dān)来(lái)说(shuō),它(tā)就(jiù)像(xiàng)是(shì)给(gěi)DNA做(zuò)“剪(jiǎn)切(qiè)粘(zhān)贴(tiē)”的(de)工(gōng)具(jù)(jù)。

DNA是(shì)(shì)生(shēng)(shēng)物(wù)(wù)体(tǐ)(tǐ)内(nèi)(nèi)携(xié)(xié)带(dài)(dài)遗(yí)(yí)传(chuán)(chuán)信(xìn)(xìn)息(xi)的(de)分(fēn)子(zi),它(tā)决(jué)定(dìng)了(le)生(shēng)物(wù)的(de)各(gè)种(zhǒng)特(tè)征(zhēng),比(bǐ)如(rú)眼(yǎn)睛(jing)的(de)颜(yán)色(sè)、身高,甚至是某些疾病的易感性。想象一下,DNA就像是一本说明书,里面(miàn)写着如何构建一个生物体的所有指令。基因编辑技术就是让我们能够阅读这本说明书,并且对其中的内容进行修改。

具体来说,基因编辑技术允许科学家们定位到DNA上的特定位置,然后进行精确的切割,就像是用剪刀剪掉说明书上的某一句话。接着,科学家们可以替换掉被剪掉(diào)的(de)部(bù)分(fēn),或(huò)者(zhě)添(tiān)加(jiā)一(yī)些(xiē)新(xīn)的(de)内(nèi)容(róng),这(zhè)就(jiù)像(xiàng)是(shì)用(yòng)胶(jiāo)水(shuǐ)把(bǎ)新(xīn)的(de)句(jù)子(zi)粘(zhān)到(dào)说(shuō)明(míng)书(shū)上(shàng)。

通(tōng)过(guò)对(duì)指(zhǐ)定(dìng)的(de)突(tū)变(biàn)基(jī)因(yīn)进(jìn)行(xíng)修(xiū)复(fù)、对(duì)有(yǒu)害(hài)基因进行清除或对有益基因进行强化等,DNA的指令得到了修改,生物也从而获得了新的功能或表型。

最流行的“分子剪刀”,也并非完美

目前,最流行的基因编辑技术叫做CRISPR-Cas9,它就像是一把非常锋利的“分子剪刀”,可以快速、高效地对DNA进行编辑。

那么,CRISPR-Cas9为(wèi)什么能够起到“分子剪刀”的作用呢?

CRISPR-Cas系统是广泛存在于细菌和古菌中的免疫系统,就像是它们身体里的“警察”,能够识别并“抓住”那些想要伤害它们的病毒。

而CRISPR-Cas9就(jiù)像是这个免疫系统中的一个特别厉害的“警察”。它由两部分组成:一个是“向导”(引导RNA),另一个是“剪刀”(Cas9蛋白)。当病毒试图入侵细菌时,“向导”会先找到病毒的DNA(就像是病毒的“身份证”),然后“剪刀”就会剪断病毒的DNA,使病毒无法正常工作。

科学家们发现这个“警察”非常厉害,于是他们就利用这个原理,开发出了一种叫做CRISPR-Cas9的工具,用来编(biān)辑(ji)其(qí)他(tā)生(shēng)物(wù)的(de)基(jī)因(yīn)。

首(shǒu)先(xiān),科(kē)学(xué)家(jiā)们(men)会(huì)设(shè)计(jì)一(yī)个(gè)“向(xiàng)导(dǎo)”,这(zhè)个(gè)“向(xiàng)导(dǎo)”可(kě)以(yǐ)精(jīng)确(què)地(de)找(zhǎo)到(dào)我(wǒ)们(men)想(xiǎng)要(yào)编(biān)辑(ji)的(de)DNA序(xù)列(liè)。然(rán)后(hòu),再(zài)使(shǐ)用(yòng)“剪(jiǎn)刀手”在那个位置上剪断DNA。接下来,细胞会尝试修复这个断裂的地方,而科学家们可以利用这个机会,把他们想要的基因片段添加进去,或者修改现有的基因。

基因编辑技(jì)术(shù)

(图(tú)片来源:veer图库)

CRISPR-Cas系统具有高效、特异、设计简单等显著优势,目前已被广泛应用于从细菌至哺乳动物等多种生物的基因编辑。

然而,即便是像CRISPR-Cas9工具这样流行的“分子剪刀”,也并非是完美的。传统的CRISPR-Cas系统在编辑过程中会切割靶标DNA双链,可能引起细胞损伤等风险。

碱基编辑技术:“剪刀”升级为“可擦笔”

为改进这一缺点,在传统的CRISPR-Cas系统基础上,衍生出了一种重要的碱基编辑技术。

碱基编辑技术就像是一支特殊的笔,它结合了切割功能受损的CRISPR-Cas和一种叫做脱氨酶的“墨水”。当“向导”找到需要修改的DNA位置时,神奇的“墨水”可以直接把那个位置的字母改成我们想要的字母,从而避免了剪断DNA双链可能会造成的损伤。

但是,这种特殊的笔也有它的限制。比如,它只能在一定范围内修改字母,这个范围就是“编辑窗口”。目前,科学家们正在努力让这支笔进化得更小巧、更精确,并且能够修改不同范围的字母。

此外,就像不同的纸可能需要不同的笔来书写一样,单一的基因编(biān)辑(ji)工(gōng)具(jù)难以在不同的生物中发挥功能。科学家们也正致力于发现更多CRISPR-Cas类型,为多样化的基因编辑工具开发提供支持。

这也是我们团队(中国科学院微生物研究所向华团队)一直努力的方向。

新款基因编辑“瑞士军刀”问世

如前文所说,在细菌的免疫系统中,CRISPR-Cas系统种类多样,不只有CRISPR-Cas9这一个“警察”。

其中,I型CRISPR-Cas系统(tǒng)可(kě)以(yǐ)组(zǔ)合(hé)多(duō)种(zhǒng)Cas蛋(dàn)白(bái)形(xíng)成(chéng)复(fù)合(hé)物(wù)(Cascade)。Cascade可(kě)以(yǐ)与不同的功能元件组装,开发不同的衍生工具。基于这一系统开发的遗传工具,在细菌和古菌中表现出高效性与适应性,但较大的基因尺寸却不利于工具的递送,限制了其在哺乳动物细胞中的应用。

因此,我们团队近年来将目光聚焦到了I-F2型系统上,它具有最精简、基因尺寸最小的Cascade。但在此前,科学家一直未能在哺乳动物细胞中检测到它的活性。这也为我们团队的研发带来了挑战。

通过生物信息学分析,我们团队在数据库中找到93个不同菌种来源的I-F2型CRISPR-Cas系统。这极大地扩充了这类系统的基因资源,为其应用提供更多选择。其中,11个不同来源的I-F2型CRISPR-Cas系统被合成并在人类细胞中测试其功能。

最终,我们发现来自奥斯陆(lù)莫(mò)拉(lā)氏菌(Moraxella osloensis CCUG 350)的I-F2型系统在人类细胞中可以表现出较好的活性。它的Cascade仅由3种蛋白组成(Cas5-6-7),基因大小之和约2.7kb, 比目前应用最广的SpCas9(约4.1kb)还要小。

我们通过将I-F2型系统融合不同的功能元件,在人类细胞中实现了不同的功能,它就像一组“瑞士军刀”,虽然小巧,但非常好用:

1.多基因表达上调:在该系统的Cas7蛋(dàn)白上融合转录激活因子VPR,我们获得了I-F2型转录激活工具(I-F2 CRISPRa),可实现多个基因的表达上调。这意味着,如果我们想让细胞多产生一些特定的蛋白质,可以用这个功能来实现。

2.靶标基因表达进一步提高:通过对引导RNA和Cas7的工程化改造,靶标基因的表达进一步提高,可以与SpCas9相当,甚至在某些位点效果更强。可以理解工具变得更加高效,可以产生更多特定的蛋白。

3.更宽的编辑窗口:在该系统的Cas5蛋白上融合表达腺嘌呤脱氨酶TadA-8e,我们获得了I-F2型腺嘌呤碱基编辑工具(I-F2 ABE),其编辑窗口覆盖约30个碱基(基于Cas9的碱基编辑工具窗口通常小于10个碱基),可以将编辑窗口内的腺嘌呤A变为鸟嘌呤G。I-F2 ABE产生的宽编辑窗口具有更多的可靶向位点,能诱导更多的突变类型。

I-F2型底层平台构建新型转录激活及碱基编辑工具

(图片来源:作者自绘)

应用潜力巨大,有望开发更多新型工具

目前来看,这款新型的基因编辑工具,展示出了巨大的潜力:

1.利于真核细胞中递送:这项研究突出了精简的I-F2型系统在真核生物中的应用潜力,其小型化的基因组成利于基因编辑工具的体内递送。

2.适用于作物育种与改良:宽窗口的碱基编辑工具适用于功能序列的破坏、作物育种中重要基因的原位饱和诱变与多重碱基编辑等。

3.新型底层平台:I-F2型系统Cascade的多蛋白组成,使其便于融合多个功能元件,为开发更多新颖的基因操作工具提供底层平台。

这项研究突出了精简的I型系统在真核生物中的应用潜力,尤其是具有宽编辑窗口的碱基编辑工具。未来,对该系统进行全面的工程化改造,还有望进一步提高其编辑效率或转录激活水平。

参考文献:

1.Pacesa, M., Pelea, O. & Jinek, M. Past, present, and future of CRISPR genome editing technologies. Cell 187, 1076-1100, doi:10.1016/j.cell.2024.01.042 (2024).

2.路遥(yáo) & 向(xiàng)华(huá). 2020 年(nián)度(dù)诺(nuò)贝(bèi)尔(ěr)化(huà)学(xué)奖(jiǎng): 源(yuán)自(zì)微(wēi)生(shēng)物(wù)学(xué)前(qián)沿(yán)研(yán)究(jiū)的(de)重(zhòng)大(dà)突(tū)破(pò). 科(kē)学(xué)通(tōng)报(bào) 65, 4171-4176, doi:10.1360/TB-2020-1416 (2020).

3.Komor, A. C., Kim, Y. B., Packer, M. S., Zuris, J. A. & Liu, D. R. Programmable editing of a target base in genomic DNA without double-stranded DNA cleavage. Nature 533, 420-424, doi:10.1038/nature17946 (2016).

4.Makarova, K. S. et al. Evolutionary classification of CRISPR-Cas systems: a burst of class 2 and derived variants. Nature Reviews Microbiology 18, 67-83, doi:10.1038/s41579-019-0299-x (2020).

5.Li, M. et al. Toxin-antitoxin RNA pairs safeguard CRISPR-Cas systems. Science 372, doi:10.1126/science.abe5601 (2021).

6.Xu, Z. et al. Native CRISPR-Cas-Mediated Genome Editing Enables Dissecting and Sensitizing Clinical Multidrug-Resistant P. aeruginosa. Cell Reports 29, 1707-1717 e1703, doi:10.1016/j.celrep.2019.10.006 (2019).

7.Cheng, F. et al. Harnessing the native type I-B CRISPR-Cas for genome editing in a polyploid archaeon. Journal of Genetics and Genomics 44, 541-548, doi:10.1016/j.jgg.2017.09.010 (2017).